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上海远慕阐述:ELISA实验血液样本收集方法
阅读次数:687 发布时间:2016/12/16 11:40:05
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    ELISA实验血液样本收集方法:
    全血根据收集的条件,分成不抗凝和抗凝两种。同时,不抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血清;抗凝分离出的上层黄色的液体我们称之为血浆。
    标本的存放温度及时间,血清、血浆及细胞分离的方法步骤也是分析前影响检验结果的重要因素。抽血后,血细胞因代谢需要,要消耗掉部分营养成分,故对这些成分进行测定时,需及时地离心以分离掉细胞成分。
    采血前个体的准备情况,如空腹时间的长短、采样时间的确定及采血时患者的姿势;止血带应用时间,输液情况,体育运动,抗凝剂及稳定剂的选用;标本的处理等均可影响到某些检验指标的水平。故标本采集过程应标准化,以限度地减少分析前误差。

    一、不抗凝收集血清:
    1、无添加剂的干燥空管收集:
    血管内壁均匀涂有防止挂壁的药剂(硅油)。它利用血液自然凝固的原理使血液凝固,等血清自然析出后,离心使用。主要用于血清生化(肝功、肾功、心肌酶、淀粉酶等)、电解质(血清钾、钠、氯、钙、磷等)、甲状腺功能、药物检测、艾滋病检测、肿瘤标志物、血清免疫学检测。
    亦可直接用干燥EP管收集全血,充分静置使得红细胞充分自然凝固后,离心分离出血清待用或保存。
    2、用促凝管收集:
    采血管内壁均匀涂有防止挂壁的硅油,同时添加了促凝剂。促凝剂能激活纤维蛋白酶,使可溶性纤维蛋白变成不可溶性的纤维蛋白聚体,进而形成稳定的纤维蛋白凝块,如果想快点出结果时,可采用促凝管。一般静置半小时到1小时,直接离心分离出血清待用或保存,常用于急诊生化。
    3、含有分离胶及促凝剂的采血管收集:
    用促凝管的优点:
    ①、加速红细胞的凝固,无需长时间的静置;
    ②、带有分离胶,有效的将血清分离出来,更好的避免溶血;
    收集血清的缺点:
    ①、需要红细胞的充分凝固,所需静置时间较长;
    ②、分离出的血清相对较少,1ml全血不抗凝约只能分离出0.2-0.3ml血清。

    二、抗凝收集血浆:
    收集抗凝全血,轻轻颠倒充分抗凝后,可直接离心分离血浆待用或保存。根据不同抗凝剂的性能特征,选择合适的抗凝剂。实验室常用的抗凝剂有肝素的各种盐、EDTA及枸橼酸钠。
    1、肝素抗凝:
    *常用的抗凝剂,一般情况下对相关指标都不会有干扰,同时抗凝比例较大(抗凝剂:全血=1:30),对血液基本没有稀释影响。
    2、EDTA抗凝:
    乙二胺四乙酸是一种氨基多羧基酸,可以有效地鳌合血液中的钙离子,鳌合钙会将钙从
    反应点移走将阻止和终止内源性或外源性凝血过程,从而防止血液凝固,与其他抗凝剂比较而言,其对血球的凝集及血细胞的形态影响较小,故通常使用EDTA盐(2K、3K、2Na)作为抗凝剂。用于一般血液学检查,不能用于血凝、微量元素及PCR检查。
    3、枸橼酸盐抗凝:
    柠檬酸钠通过作用于血样中钙离子鳌合而起抗凝作用,国家临床实验室标准化委员会(NCCLS)推荐为3.2%或3.8%,抗凝剂与血比例为1:9,主要用于纤溶系统(凝血酶原时间、凝血酶时间、活化部分凝血酶时间、纤维蛋白原)。采血时应注意采足血量,以保证检验结果的准确性,采血后应立即轻轻颠倒混匀5-8次。由于抗凝比例较小(抗凝剂:全血=1:9),对血液有一定的稀释,一般不建议。

    三、收集血清、血浆所用离心转速:
    分离血清或血浆,根据种属不同,离心转速也有差异,推荐离心转速为:
    ①、小鼠:一般1000-1500转/分,离心8-10分钟;
    ②、大鼠、兔子:一般2000-2500转/分,离心8-10分钟;
    ③、人:一般2500-3000转/分,离心8-10分钟。

    四、高脂及溶血因素的影响:
    溶血的影响:
    溶血对某些检验指标的的影响不仅取决于所采用的方法,也取决于所用的分析仪器。采用双波长测定法可在一定程度上消除Hb的颜色干扰,然而Hb的干扰并不能完全消除,尤其是当Hb可以与采用的试剂发生作用时。总的来说,轻微的溶血,对大多数临床化学指标的测定方法无明显干扰。严重的溶血,可能有两方面的影响:(1)测定成分在红细胞内的浓度高于血浆时,导致测定结果偏高;(2)测定成分在RBC内浓度低于血浆时,产生轻微的稀释效应。

    五、全血或红细胞的收集及保存
    测定全血或者是红细胞中相关指标的话,首先需要收集抗凝全血。
    全血:收集抗凝全血,轻轻颠倒充分抗凝后,可直接定量吸取全血,用冷蒸馏水制备溶血液后用于不同指标的检测;也可定量吸取全血,转入EP管,低温冻存(温度越低越好),测定之前解冻并按比例加入冷蒸馏水制成溶血液用于检测。红细胞:收集抗凝全血,轻轻颠倒充分抗凝后,直接离心吸走血浆,留下层红细胞,加入3倍体积的生理盐水,轻轻颠倒混匀,500~1000转/分,离心5分钟,弃上清留沉淀红细胞,重复2~3次,至上清液无色为止(洗涤红细胞)。
    ①、直接定量吸取红细胞,按比例加入冷蒸馏水制成溶血液待测;
    ②、定量吸取红细胞,转入EP管,立即低温冻存(温度越低越好),测定之前解冻,并按
    比例加入冷蒸馏水制成溶血液用于检测(解冻后部分红细胞会破裂,因此样本冷冻保存之前必须进行定量)。

原创作者:上海远慕生物科技有限公司

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